Win7 64位系统下，Q5000 驱动程序软件安装流程

如果你的电脑系统是win7 64位（只限64位），你需要手动安装Q5000驱动程序软件，具体安装步骤如下：

注意：安装驱动程序软件前，不要将Q5000与电脑连接

将CD光盘放进CD驱动器，打开文件夹“Q5000 Win7 (64) ……”，点击“OmniDriver……”安装驱动程序软件；

用USB将Q5000和电脑连接（此时电脑驱动安装错误提示），打开控制面板的设备管理器；

将鼠标箭头移到带黄色感叹号的“Ocean Optics …..”上，按下鼠标右键，选择“更新驱动程序软件”；

在下面的提示中，选择“浏览计算机以查找驱动程序软件”；

在如下图的提示框内，用“浏览(R)…”键，按照下面的路径找出驱动程序软件的文件夹：“C:\Program Files\Ocean Optics\OmniDriver”，然后点击“下一步(N)”；

电脑自动安装驱动程序软件成功后，弹出下面的提示框，点击“关闭(C)”，推出驱动程序软件更新。

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美国Quawell超微量分光光度计

Q5000应用指南     文档三

测核酸蛋白时的一些常用的小知识点

V1.0

2012－09

注：为了使Q5000用户更好地使用我们的产品，本文提供了一些使用中常用的一些小知识点，帮助用户更好的使用我们的产品。

方法如下：

根据吸光值的比值判断核酸（DNA、RNA）纯度：

核酸纯度通常用260/280和260/230的值来评价。

DNA260/280

1）1.7~1.9：DNA比较纯；

2）大于1.9：有可能有RNA污染或者DNA有降解；

3）小于1.7：有可能有蛋白质污染。

DNA 260/230

260/230是一个参考值，用户可以通过这个值，大致了解DNA是否含盐太高。这个值在什么范围内属于正常，没有一个标准，需要用户自己判断。

   RNA 260/280

1）1.8~2.0：正常；

2）大于2.0：样品可能有盐残留或者RNA有降解；

3）小于1.8：样品可能有蛋白质或有机物污染。

RNA 260/230

1）2.0以上：正常；

2）小于2.0：样品可能有盐或者有机物污染。

可测核酸和蛋白的浓度范围：

核酸：

dsDNA 0.5-5000ng/ul

蛋白：

0.05-100mg/ml(BSA)

如何测纯度较差的样品的浓度：

理论上，超微量分光光度计由于测的样品量非常小，测纯度低的样品效果会比测纯度高的样品差一些，但是也可以根据一些方法测出纯度低的样品的大概浓度。

测之前，把样品充分混合均匀，可以通过摇晃或离心或用移液器反复吸液放液。

测的时候，吸取位于溶液中部的样品。

多测几次，取比较接近的数值，测量结果就是这几个接近的数值的平均值。

美国Quawell超微量分光光度计

Q5000应用指南  文档二

日常维护保养指南

V1.0

2012－09
注：为了使Q5000用户可以更好地维护和保养仪器，本文提供了一些在实际应用中行之有效的方法，参照这些方法，实验人员可以使仪器在更长时间内正常稳定的工作。

除此之外，我们有专门的技术人员对仪器进行维护和校准，建议用户每年把仪器送到技术人员处校准2次，购买后第一年的2次校准免费。


方法如下：

1.在每个样品测量后尽快用干净的纸擦干上下测试平台残留的样品，防止样品残留在检测平台上。
2.每次使用完仪器后，都要对检测平台进行清洁，方法如下：把纯水上样到测试平台，合上检测臂，等3秒钟，擦拭掉纯水，然后再将上述步骤重复一遍。
此外，每隔一段时间最好用酒精擦拭一次，当仪器检测平台比较脏时也需要用酒精擦拭，仪器过脏会造成测量读数不准确。
3.检测平台主要是不锈钢及石英，请勿测量含腐蚀性的样品，如HF。
4.在运输、使用和存放的过程中注意不要压到仪器上的光纤线。
5.长期不使用仪器时，每隔一段时间通电开一次机，可以起防潮作用。
6.长期不使用机器时，请盖上防尘布或者防尘罩，以防灰尘积聚在检测平台上。
 

美国Quawell超微量分光光度计  

Q5000应用指南 文档一

如何提高低浓度样品测量结果的准确性和稳定性   

V1.0  

2012－08  

注：为了提高Q5000用户在测量低浓度样品时的准确性，本文提供了一些在实际应用中行之有效的方法，参照这些方法，实验人员可以有效提高测量低浓度样品的准确性和稳定性。  

一般来讲，我们将浓度在20ng/ul以下的样品称之为低浓度样品，对于浓度在20ng/ul以上的样品，参照本文的方法，对测量结果的准确度和稳定性也会有明显帮助。

方法一：彻底清理测量平台   

方法二：上样及对样品的要求

1.上样时，样品体积最好在2-5ul。

2.上样以后，尽快放下测量臂，点measure 测量，减少样品蒸发对测量结果造成的影响。

3.如果连续测了多种样品，最好从低浓度样品开始测，如果测低浓度样品之前测了高浓度的样品，需要用dd 水把检测台洗2次再进行测量。

4.提高样品的纯度，减小杂质产生的影响。

5.对于那些浓度均一性不好的样品（比如细胞）或者多种溶液混合后的样品（比如Bradford法用到的蛋白与考马斯亮蓝混合液）要将样品充分摇匀再进行测量。